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OVARIAN DEVELOPMENT IN OVERWINTERING PEAR PSYLLA, CACOPSYLLA PYRICOLA (HOMOPTERA: PSYLLIDAE): SEASONALITY AND EFFECTS OF PHOTOPERIOD

Published online by Cambridge University Press:  31 May 2012

David R. Horton ,
Debra A. Broers ,
Tonya Hinojosa  and
Tamera M. Lewis
David R. Horton
Affiliation:
USDA-ARS, 5230 Konnowac Pass Road, Wapato, Washington, USA 98951
Debra A. Broers
Affiliation:
USDA-ARS, 5230 Konnowac Pass Road, Wapato, Washington, USA 98951
Tonya Hinojosa
Affiliation:
USDA-ARS, 5230 Konnowac Pass Road, Wapato, Washington, USA 98951
Tamera M. Lewis
Affiliation:
USDA-ARS, 5230 Konnowac Pass Road, Wapato, Washington, USA 98951
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Abstract

Effects of photoperiod, time of year, temperature, and an insect growth regulator (fenoxycarb) on ovarian development rate in overwintering pear psylla, Cacopsylla pyricola (Foerster), were determined. Winterform pear psylla were collected from the field at intervals between October and February, and reared at 20 °C and one of three treatments: short-day photoperiod, long-day photoperiod, or short-day photoperiod + fenoxycarb. Insects were then dissected at intervals to score ovarian development. Baseline scores (i.e., ovarian development in the field on date of collection) increased very slowly between October and February. By mid-February, only about 20% of insects in the field were categorized as having postdiapause status based upon ovarian development. In the laboratory, time required for insects to reach postdiapause status decreased between the October and February collection dates. Number of days necessary for 50% of the long-day insects to reach postdiapause status was approximately 2 weeks in October, 6 days in December, and < 2 days in February. Short-day insects also required fewer than 2 days in February, but required > 2 weeks in the October and December samples. Our results suggested that insects collected in January and February had completed diapause but that ovarian development was subsequently prevented in the field by low temperatures. Fenoxycarb caused rapid ovarian development even in October-collected insects; rate of development was only slightly more rapid in the February-treated psylla.

Résumé

Les effets de la photopériode, du moment de l’année, de la température et d’un régulateur de croissance (le fénoxycarbe) sur le développement ovarien ont été étudiés chez la forme d’hiver de la Psylle du poirier, Cacopsylla pyricola (Foerster). Des psylles d’hiver ont été capturées à intervalles en nature, entre octobre et février, gardées à 20 °C et soumises à l’un des trois traitements suivants : photopériode de jour court, photopériode de jour long ou photopériode de jour court + fénoxycarbe. Les insectes ont été par la suite disséqués à intervalles pour y examiner le développement ovarien. Le développement de base (i.e. développement ovarien en nature le jour de la capture) a augmenté très lentement entre octobre et février. Au milieu de février, seulement environ 20% des insectes avaient atteint la phase de post-diapause d’après l’importance de leur développement ovarien. En laboratoire, le temps requis pour atteindre le stade de post-diapause a diminué entre octobre et février. Le nombre de jours nécessaires pour que 50% des insectes soumis à une photopériode de jour long atteignent la phase de post-diapause a été estimé à 2 semaines en octobre, 6 jours en décembre et moins de 2 jours en février. Les insectes soumis à une photopériode de jour court ont atteint la phase de post-diapause en moins de 2 jours en février, mais ont nécessité plus de 2 semaines en octobre et en décembre. Nos résultats indiquent que les insectes capturés en janvier et février avaient déjà subi leur diapause, mais que leur développement ovarien a par la suite été stoppé par de basses températures. Le fénoxycarbe a favorisé un développement ovarien rapide, même chez les insectes capturés en octobre; le taux de développement n’a été que légèrement plus rapide chez les psylles traitées en février.

[Traduit par la Rédaction]

Type
Articles
Information
The Canadian Entomologist , Volume 130 , Issue 6 , December 1998 , pp. 859 - 867
Copyright
Copyright © Entomological Society of Canada 1998

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