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Régénération directe in vitro de l'Ananas comosus (L.) Merrilvar. Cayenne à partir de couronnes cultivées en milieu liquide

Published online by Cambridge University Press:  15 April 2002

Ndoumou Denis Omokolo
Affiliation:
Université de Yaoundé I, École normale supérieure, Laboratoire de Physiologie végétale, LAF314, BP 47, Yaoundé, Cameroun
Fotso
Affiliation:
Université de Yaoundé I, École normale supérieure, Laboratoire de Physiologie végétale, LAF314, BP 47, Yaoundé, Cameroun
Margaret Awah Tita
Affiliation:
Université de Yaoundé I, École normale supérieure, Laboratoire de Physiologie végétale, LAF314, BP 47, Yaoundé, Cameroun
Nicolas Niemenak
Affiliation:
Université de Yaoundé I, École normale supérieure, Laboratoire de Physiologie végétale, LAF314, BP 47, Yaoundé, Cameroun
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Abstract

Introduction. La plupart des travaux sur la multiplication in vitro de l'ananas ont utilisé des explants de diverses origines, mais peu font état de l'utilisation de couronnes pour l'obtention de plantules in vitro. Par ailleurs, la régénération de plants effectuée via la formation de cals est susceptible d'induire des variations somaclonales. De ce fait, une méthode de régénération directe in vitro à partir des couronnes a été testée. Matériel et méthodes. Après désinfection, des couronnes d'ananas de la variété cayenne ont été cultivées sur un milieu liquide de Murashige et Skoog dilué de moitié, contenant (2 à 10) mg BAP × L-1 ou (2 à 12) mg kinétine × L-1. L'induction des bourgeons axillaires a été observée après 14 j de culture et le nombre de plantules développées a été compté après 65 j. Certaines plantules ont alors été acclimatées sur un mélange de terre et vermiculite avant d'être transférées au champ. Résultats et discussion. Les meilleurs taux d'induction et de développement de plantules ont été obtenus avec 4 mg BAP × L-1 (en moyenne 6,7 plantules par couronne en 65 j) et 6 mg kinétine × L-1 (11,9 plantules par couronne). Les plantules acclimatées et transférées au champ ont survécu à 100 %. Conclusion. Le démarrage direct d'un nombre important de bourgeons axillaires de couronne grâce à l'utilisation d'une cytokinine constitue une technique intermédiaire entre les pratiques d'horticulture et la culture in vitro. Toutefois, la productivité des plants issus des plantules ainsi régénérées devra être évaluée comparativement à celle des plants obtenus de façon traditionnelle afin d'en tester les performances.

Type
Research Article
Copyright
© CIRAD, EDP Sciences

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References

Anonyme, Annuaire des statistiques du secteur agricole 1999/2000, FAO, Agri-Stat 6 (2000) 50-51.
Anonyme, Perspectives à moyen terme des produits agricoles. Projections à l'horizon 2005, FAO, Rome, italie, 2000, pp. 129-130.
Brewbaker, J., Gorrez, D., Genetics of cell, in: Monocot genera Ananas (pineapple) and Gastericia, Amer. J. Bot. 54 (5) (1967) 611-616. CrossRef
Aghion, D., Beauchesne, G., Utilisation de la technique de culture stérile d'organes pour obtenir des clones d'ananas, Fruits 15 (1962) 464-466.
Fitchet, M., Tissue culture of pineapple, Information Bulletin, Citrus Subtrop. Fruit Res. Instit. 149 (1985) 1-2.
Mapes, M.O., Tissue culture of bromeliads, Comb. Proc. Int. Plant Propagators' Soc. 3 (1973) 47-55.
Mathews, V.H., Rangan, T.S., Maranyanaswamy, S., Micropropagation of Ananas sativus in vitro, Z. Pflanzenphysiol. 79 (5) (1976) 450-454. CrossRef
Teng, W.L., An alternative propagation method of ananas through nodule culture, Plant Cell Rep. 16 (7) (1997) 454-457.
Zepada, C., Sagawa, Y., In vitro propagation of pineapple, HortScience 16 (4) (1981) 495.
Wakasa, K., Variation in the plants differentiated from the tissue culture of pineapple, Jpn. J. Breeding 29 (1) (1979) 13-22. CrossRef
Skirvin R.M., Fruit crops, in: Conger B.V. (Ed), Cloning agricultural plants via in vitro techniques, Chem. Rubber Co. Press, Boca Raton, Fla., USA, 1981, pp. 51-139.
Larkin, P.J., Scowcroft, W.R., Somaclonal variation: a novel source of variability from cell cultures for plant improvement, Theor. Appl. Genet. 60 (4) (1981) 197-214. CrossRef
Murashige, T., Skoog, F., A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture, Physiol. Plant. 15 (1962) 473-497. CrossRef
Drew, R.A., Pineapple tissue culture unequalled for rapid multiplication, Qld. Agric. J. 106 (5) (1980) 447-451.
Wee, Y.C., Mass propagation of pineapple planting materials, Singap. J. Prim. Ind. 7 (1) (1979) 24-26.
Rao, N.K.S., Swamy, R.D., Chacko, E.K., Differentiation of plantlets in hybrid embryo callus of pineapple, Sci. Hortic. 15 (3) (1981) 235-238. CrossRef
Sudhadevi P.K., Geetha C.K., Rajeevam P.K., Valsalakumari P.K., Performance of in vitro developed pineapple plantlets of cv. Kew, South Indian Hortic. 43 (5/6) (1995) 166-167.
Mathews, V.H., Rangan, T.S., Growth and regeneration of plantlets in callus culture of pineapple, Sci. Hortic. 14 (3) (1981) 227-234. CrossRef
Hsia ChiNi, , Korban, S.S., Organogenesis and somatic embryogenesis in callus culture of Rosa hybrida and Rosa chinensis minima, Plant Cell Tiss. Org. Cult. 44 (1) (1996) 1-6. CrossRef
Hirimburegama, K., Wijeshinghe, L.P.J., In vitro growth of Ananas comosus L. Merr (pineapple shoot apices) on different media, in: Hayashi M., Kano A., Goto E. (Eds.), Acta Hortic. 319 (1992) 203-208. CrossRef
Mayak, S., Tirosh, T., Ilan, A., Duvdevani, A., Khayat, E., Growth and development of pineapple (Ananas comosus (L.) plantlets cultured in vitro at enriched and ambient CO2 environments, in: Drew R.A. (Ed.), Acta Hortic. 461 (1998) 225-229. CrossRef
Almeida, W.A.B. de, Matos, A.P. de, Souza, A. da, Effects of benzylaminopurine (BAP) on in vitro proliferation of pineapple (Ananas comosus (L.) Merr.), in: Martin-Prével P., Hugon R. (Eds.), Acta Hortic. 425 (1997) 235-242. CrossRef
Wakasa, K., Koga, Y., Kudo, M., Differentiation from in vitro culture of Ananas comosus, Jpn. J. Breeding 28 (1978) 113-121. CrossRef
DeWald, M.G., Moore, G.A., Sherman, W.B., Evans, M.H., Production of pineapple plants in vitro, Plant Cell Rep. 7 (7) (1988) 535-537. CrossRef
Loison-Cabot, C., État des connaissances botaniques, cytogénétiques et biologiques sur la reproduction de l'ananas, Fruits 45 (4) (1990) 347-355.
Kiss, E., Kiss, J., Gyulai, G., Heszky, L.E., A novel method for rapid micropropagation of pineapple, Sci. Hortic. 30 (1) (1995) 127-129.